總RNA柱式提取試劑盒

產品描述

總RNA柱式提取試劑盒可以快速從細胞、細菌和部分動物組織中提取高質量的總RNA，不使用酚和氯仿等有毒物質。試劑盒中裂解液（Lysis Buffer）含有強變性劑和RNA酶抑制劑，能夠迅速裂解樣品并失活RNA酶，確保操作過程中RNA的完整性。提取得到的總RNA可用于RT-PCR、qPCR、Northern blotting、cDNA文庫構建等多種實驗。整個提取過程僅需10 min，操作簡單快速、穩定性高。

本試劑盒僅適用于部分組織類型，包括肝臟、腸、腦、脾臟和柔軟的腫瘤組織，不適用于肺、心臟、皮膚、骨骼、肌肉等堅韌的組織。

訂購信息

產品組分

u  Wash Buffer使用前請加入48ml無水乙醇，搖勻后使用。

運輸與保存

常溫運輸。常溫保存，有效期12個月。

使用方法

一、 樣品裂解

1.       貼壁培養的細胞

(1)       移除培養基，PBS洗一次；

(2)       在培養板中加入500 μL的Lysis Buffer (＜3x10⁶個細胞)，水平放置片刻，再用槍頭吹吸或攪拌數次，直至細胞裂解。轉移至1.5mL離心管中，用力反復吹打數次，充分裂解直到看不到細胞團為止，然后進行步驟二；

注：(1) 細胞樣品建議用6孔板或35mm培養皿培養細胞，培養至合適的密度進行 RNA提取 (24孔板培養的細胞培養至90%以上的細胞密度也可使用)。 (2) 不方便直接裂解的培養容器，可以使用細胞刮刮下細胞或者胰酶消化后，將細胞收集到離心管中。 (3) 對于T細胞/B細胞等體積很小、RNA含量很低的細胞，建議增加細胞數到至少1x10⁶以上。

2.       懸浮培養的細胞

(1)       取1~3x10⁶個細胞的懸液至1.5 mL離心管，1000 g離心1 min收集細胞；

(2)       去上清，加入500 μL的Lysis Buffer，用力吹吸10次，vortex 10 s，保證細胞裂解，看不到細胞團，然后進行步驟二。

3.       細菌細胞

5,000 rpm離心3 min收集適量的菌體(＜5x10⁸)，棄去上清，加入100μL含有溶菌酶的TE buffer，吹打混勻，室溫靜置孵育數分鐘。加入500 μL的Lysis Buffer，劇烈振蕩20 s，12,000rpm離心1~2 min，取上清，然后進行步驟二。

4.       動物組織（適合腸、肝、腦、脾、腫瘤，不適用肺、心、皮膚等堅硬組織）

(1)       勻漿器勻漿：切取新鮮組織10~50mg至1.5 mL離心管中，加入500 μL的Lysis Buffer，用組織勻漿機勻漿組織，直至無肉眼可見的組織塊。12,000 rpm離心1~2 min。

(2)       或液氮研磨：在液氮中將10~50mg組織充分研磨，將研磨成粉的樣品轉移至離心管中，加入加入500 μL的Lysis Buffer，劇烈振蕩20 s，12,000rpm離心1~2 min。

(3)       轉移不超過400μL上清至新離心管中。

二、RNA提取

1.       細胞樣品

較精確估計裂解液體積，向細胞裂解液中加入等體積的無水乙醇，將離心管劇烈顛倒幾次，或用移液器用力吹吸數次，充分混勻，然后將液體轉移至離心柱上，進行步驟3。注：可能會產生沉淀,這是正常現象，不影響提取過程，繼續后續操作。

2.       組織樣本

較精確估計裂解液體積，向裂解液中加入0.5倍體積的無水乙醇（或等體積的70%乙醇），將離心管劇烈顛倒幾次，或用移液器用力吹吸數次，充分混勻，然后將液體轉移至離心柱上。

3.       7,000 rpm離心1 min（如離心柱上仍有液體殘留可增加轉速至12,000 rpm）,棄廢液。

4.       向RNA柱中加入500 μL的Wash Buffer，12,000 rpm離心1 min。

5.       倒掉廢液，將RNA柱裝回收集管，12,000 rpm空管離心1 min，去除殘留的Wash Buffer。

6.       取出RNA吸附柱，放入一個RNase-free的1.5mL離心管中，開蓋晾干1 min。向RNA柱的膜中心部位加入25~50uL的Elution buffer，室溫靜置1 min。

7.       12,000 rpm離心1 min。樣品可長期保存至-80℃。注：加洗脫液體積不應少于25uL，否則會影響回收率，為了獲得更大濃度的RNA，可將離心的RNA溶液重新加入到吸附柱，重復洗脫一遍。

注意事項

1.     本產品僅限于科學實驗研究使用，不得用于臨床診斷、治療等領域。

2.     加入Lysis Buffer后，一定要充分振蕩，保證RNA提取的效果；如果混合液非常粘稠難以轉移，明顯樣品量過多，增加Lysis buffer用量或減少樣本用量。

3.     細胞或組織裂解產物，上柱前需要加入無水乙醇，充分混勻之后加入離心柱離心。

4.     使用的樣本避免反復凍融，以免影響RNA的產率和質量。

5.     關于RNA純度：OD260/OD280和OD260/OD230比值是衡量RNA純度的指標, 高質量的RNA，OD260/OD280的值在1.9-2.2之間，OD260/OD230大于1.8（比較純凈的比值大于2.0）。本試劑盒提取RNA,使用Nanodrop等微量分光光度計測定OD 260/280在1.90~2.2之間，OD260/230在2.0~2.2之間均屬正常。

6.     關于DNA微量殘留：在總RNA提取過程中，通常無法避免基因組DNA的微量殘留。使用本試劑盒，由于結合了的緩沖液體系和高特異性吸附膜，獲得的總RNA中DNA殘留量較少，對大多數qPCR擴增過程影響不大。如果實驗對基因組DNA殘留較為敏感，建議采取以下措施：①DNase I 處理：在后續步驟中使用DNase I 酶消化基因組DNA。②優化引物設計：選擇跨內含子的引物或設計在基因組DNA和cDNA上擴增產物大小不同的引物對，以避免DNA作為模板參與擴增反應。